Электронный Парамагнитный резонанс в биологии
Исследования алъдегидоксидазы
Мы начали с рассмотрения ксантиноксидазы потому, что этот фермент больше, чем какой-либо другой, исследовался методом ЭПР и поэтому может служить хорошей иллюстрацией различных способов использования этой техники. Но метод ЭПР применялся также для изучения многих других окислительных ферментов, в том числе альдегидоксидазы. Этот фермент очень близок к ксан- тиноксидазе как по механизму переноса электронов, так и по своей функции. Как и в случае ксантиноксидазы, спектры ЭПР альдегидоксидазы обусловлены свободными радикалами флавинового компонента, а также ионами молибдена и железа [14]. Исследование кинетики этих сигналов показало, что она близка к кинетике сигналов ксантиноксидазы, но более подробные работы [15] отчетливо продемонстрировали, что между двумя этими ферментами имеются существенные различия, связанные в основном с окисли - тельно-восстановительными состояниями атомов молибдена.
Кие возможности ЭПР в исследовании ферментативных реакций. Этот метод не только позволяет сопоставлять кинетику различных |
Фиг. 83. Схематическое изображение механизмов переноса электронов в ксаптиноксидазной реакции [11]. Объяснение см. в тексте. |
Так, альдегидоксидаза печени даже в неактивном состоянии дает значительный по величине сигнал ЭПР, характерный для Мо (У). Значение g-фактора этого сигнала, соответствующее g2, Равно 1,97; сигнал обладает сверхтонкой структурой, характерной для ядра молибдена и, следовательно, может быть вполне одно
значно приписан ионам молибдена. Более того, судя по интенсивности таких сигналов, 25% всего присутствующего в ферменте молибдена находится в неактивном состоянии it, следовательно, не принимает участия в окислительно-восстановительных превращениях, связанных с ферментативной активностью. Измерения времени релаксации, описанные в гл. 7, позволили четко разделить эти две различные формы молибдена. Другое различие между альдегид - и ксантиноксидазами заключается в том, что в спектре альдегидоксидазы отсутствуют линии, эквивалентные у - и 6-сигналам. Кроме того, при сравнении кинетики восстановленной альдегидоксидазы и альдегидоксидазы, инкубировавшейся после восстановления в течение некоторого времени, обнаруживаются значительные разлитая.
Эти исследования с использованием методов непрерывного потока и быстрого замораживания иллюстрируют, каким образом с помощью разных методов можно исследовать разные свойства ферментативного процесса. Так, в первой серхш измерений [16] вначале быстро смешивали фермент и субстрат, как в обычном методе непрерывного потока, и немедленно после этого смесь пере - мевшвали с буфером, насыщенным кислородом. Полученные результаты сравнивали затем с данными другой серии экспериментов, в которых сначала вшриц заполняли ферментом и субстратом в анаэробных условиях (процесс этот занимает около 20 мин), и только после этого к полученной смеси добавляли окси - генированный буфер. Было обнаружено, что в случае предварительной инкубации фермента и субстрата без доступа кислорода последующему реокислению подвергаются лишь флавиновый компонент и ион железа, тогда как ион молибдена остается, по-види- мому, полностью инертным. Если же за процессом восстановления сразу же следует реокисление, все три компоненты сигнала ЭПР, возникающего при восстановлении (обусловленные флавином, молибденом и железом), быстро отвечают на добавку кислорода. Эти эксперименты не только подтверждают лабильность восстановленного молибдена, но и приводят к предположению, что молибден является переносчиком, ближе всего расположенным к субстрату. Эксперименты, проведенные на альдегидоксидазе, позволяют заключить, что, как и в случае ксантиноксидазы, все три компонента — молибден, флавин и железо — участвуют в переносе электрона от субстрата на кислород в последовательности, указанной на фиг. 83.