БИОСИНТЕЗ БЕЛКА В КЛЕТКАХ ЭУКАРИОТОВ
Генетический аппарат многоклеточных организмов — эука- риотов — иной, чем у бактерий — прокариотов, не имеющих ядер. Хромосомы эукариотов содержат не только ДНК, но и белки — они построены из нуклеопротеидов. Важнейшие белки хромосом — гистоны, представляющие собой основные белки, содержащие значительные количества лизина и аргинина (см. ниже стр. 45). Кроме того, в хромосомах присутствуют разнообразные негистоновые белки.
Все соматические клетки одного организма содержат один и тот же набор генов, тождественный набору генов в исходной зиготе. В то же время клетки различных тканей сильнейшим образом отличаются друг от друга и морфологически и функционально. Их различия сводятся к тому, что в разных клетках одного и того же организма функционируют различные белки. Это означает, что в разных клетках работают разные гены и молекулярный смысл дифференцировки, приводящей к специализации клеток эукариотов, состоит в регуляции работы генов.
В клетке данного сорта трансляция осуществляется лишь для малой доли генов.
Ряд фактов показывает, что модель оперона Жакоба иМоно, описанная в предыдущем параграфе, неприменима для эукарио - тов. В то же время общие принципы регуляции функционирования ДНК, впервые введенные в этой модели, сохраняют свое значение. Гены эукариотов действуют независимо друг от друга, но их совокупности образуют целостные регуляторные системы, которые можно назвать транскриптонами. Оперон есть бактериальный транскриптон.
Вследствие не преодоленных еще трудностей при расчленении ДНК эукариотов на отдельные функциональные отрезки основные результаты, относящиеся к организации транскриптона, получены путем исследования РНК, синтезируемой на ДНК. В работах Георгиева и его сотрудников было показано существование в животных клетках нового типа РНК — ядерной РНК, которая является предшественником мРНК [91, 92]. Соответственно эта РНК обозначается как про-мРНК. Про-мРНК имеет очень большой молекулярный вес, она состоит в среднем из 10 000—15 000 нуклеотидов. мРНК, на которой строятся белки, состоит в среднем всего лишь из тысячи нуклеотидов.
Установлено, что про-мРНК превращается в мРНК, но при этом большая часть про-мРНК распадается. Участки про-мРНК, из которых получается мРНК, и распадающиеся участки синтезируются на разных участках ДНК-
Вся про-мРНК связана со специфическими белковыми частицами— информоферами. Комплексы про-мРНК с информофера - ми в синтезе белка не участвуют.
Исходя из этих фактов, Георгиев предложим модель транскриптона эукариотов, состоящего из большой акцепторной зоны и относительно малой структурной зоны, непосредственно ответственной за синтез одного или нескольких белков. Акцепторная зона не несет структурной информации, но содержит участки, взаимодействующие с регуляторными белками. В начале транскриптона, величина которого много больше оперона бактерий, находится промоторный участок, к которому присоединяется РНК-полимераза. Перемещение полимеразы вдоль транскриптона (и, следовательно, транскрипция) регулируется в результате взаимодействия регуляторных белков с акцепторными участками. Синтезируется гигантская про-мРНК, вблизи З'-конца которой находится отрезок, соответствующий функциональной, структурной, мРНК. Затем происходит распад всей неинформационной части про-мРНК, а оставшаяся мРНК переносится из ядра в цитоплазму, где и служит матрицей для синтеза белков.
Эта модель обеспечивает гораздо более тонкую регуляцию действия генов, их блокирование и деблокирование, чем в случае прокариотов. Дело в том, что взаимодействие регуляторных белков и гистонов с акцепторными участками влияет на структуру хроматина и хромосом, определяя способ упаковки ДНК. От способа упаковки зависит возможность продвижения РНК - полимеразы вдоль транскриптона. Кроме того, и в отсутствие компактной упаковки нуклеопротеидов в растянутом транскриптоне присоединение регуляторных белков препятствует перемещению РНК-полимеразы.
В составе одного транскриптона имеются различные акцепторные участки, узнающие различные регуляторные белки. Тем самым, разные регуляторные белки могут влиять на работу данного транскриптона. И наоборот, разные транскриптоны могут узнавать один и тот же белок. Соответственно присоединение или отделение одного белка может включать или выключать целую совокупность транскриптонов.
, Структурная
TOC \o "1-3" \h \z Акцепторная зана зона
Г—— „ ,
■■ ■ і і =^ДНК
Р аг а2 а3 ak а. т s„
Неанфорттивная зона,
•у f 1 /' ' 1 nP°-Mm
Нуклеазы і 1 мРНК
Рис. 1.11. Схема транскриптона, р —промотор, 0[ ат—акцепторные центры, sn — структурные гены.
Большие размеры акцепторного участка ДНК и, значит, неинформационной части про-мРНК, оказываются необходимыми именно для осуществления тонкой и многообразной регуляции, без которой не мог бы существовать дифференцированный многоклеточный организм. Согласно модели Георгиева, мРНК лежит в конце гигантской про-мРНК - Поскольку имеются акцепторные участки, одинаковые у разных транскриптонов, то в начальной части про-мРНК должны находиться последовательности, одинаковые у различных про-мРНК. Это было подтверждено экспериментально [92].
Схема транскриптона по Георгиеву показана на рис. 1.11. Для понимания молекулярного строения транскриптона и, следовательно, хромосом, необходимо прежде всего исследовать взаимодействие ДНК с гистонами и негистоновыми белками. Гистоны состоят из ряда фракций — индивидуальных белков. Установлена первичная структура гистонов, выделенных из различных организмов. Почти для всех фракций эта структура исключительно устойчива в эволюции. Так, гистоны Н2 из гороха и из тимуса теленка' разнятся лишь двумя аминокислотными остатками из ста двух [93, 94].
Постоянство первичной структуры гистонов, возможно, определяется тем, что у гистонов функциональна вся молекула: некоторые ее участки ответственны за связывание с ДНК, другие участки —за взаимодействия между белками (см., например, [95—97]). В каждой хромосоме содержатся десятки тысяч одинаковых молекул гистона; небольшое изменение структуры локального комплекса гистон — ДНК может привести в результате многократного повторения к радикальному изменению структуры хромосомы в целом. Это также может существенно ограничивать скорость изменения первичной структуры гистонов в процессе эволюции. Данные, характеризующие структуру гистонов, приведены в [98, 99].
Гистоны, по-видимому, образуют солевые связи с фосфатными группами ДНК - Весовое соотношение гистоны/ДНК в де - зоксирибонуклеогистоне из тимуса теленка составляет 1,3/1, и в среднем число основных групп гистонов примерно равно числу фосфатных групп в связанной с ними ДНК. Предположительно а-спиральные участки гистонов располагаются в бороздке двойной спирали ДНК; неспиральные и неосновные остатки образуют петли [100]. Проведены детальные исследования конфор - мационных свойств гистонов и нуклеогистонов [101].
В ходе развития клетки конформации хромосомных белков и их ДНК-комплексов изменяются, и геном испытывает функциональные изменения, становясь более или менее доступным действию регуляторных белков цитоплазмы. По-видимому, главная роль гистонов состоит именно в регуляции структуры хромосом, но не в регуляции дифференцированной транскрипции генов в клетках разного типа. В то же время установлены изменения состава и тонкой структуры хромосомных белков на разных стадиях развития клеток и их дифференцировки. Найдены клеточно-специфичные гистоны.
Общая ситуация достаточно сложна. С одной стороны, гистоны характеризуются относительно большим постоянством первичной структуры у разных видов. С другой стороны, в разных клетках не только варьирует относительное содержание основных гистоновых фракций, но наблюдаются видовая и тканевая специфичность ряда фракций. И то, и другое создает возможности регуляции активности генома, отсутствующие у прокариотов, но природа этой регуляции еще недостаточно изучена (см. [98, і 02]).
Основная проблема молекулярной биофизики нуклеогистонов состоит в установлении структурных и функциональных характеристик взаимодействий гистонов с ДНК, в исследовании соответствующих явлений молекулярного узнавания. Как уже сказано, характер этих взаимодействий изменяется во время развития клеток. На гигантских хромосомах двукрылых насекомых на определенной стадии развития появляются «пуффы»— вздутые участки, являющиеся локусами наиболее интенсивного синтеза РНК. В этих участках происходят конформационные и химические (фосфорилирование, ацетилирование, метилирование) изменения гистонов, что и обеспечивает изменение функциональности соответствующих генов. По-видимому, в «пуф - фах» гистоны слабее связаны с ДНК, они более доступны действию протеаз и легко отделяются. Соответственно в «пуффах» гистоны не мешают работе РНК-полимеразы. В нормальных условиях гистоны препятствуют транскрипции. Синтез РНК стимулируется их удалением из изолированных фракций хроматина.
Во всех организмах эукариотов хромосомы проходят мито- тический и, соответственно, мейотический цикл. В интерфазе митоза хромосомы невидимы в обычном микроскопе, генетический материал клеточного ядра представлен нуклеопротеидны - ми хроматиновыми нитями, наблюдаемыми с помощью электронной микроскопии. В профазе хромосомы спирализуются и уплотняются, становясь хорошо видимыми в микроскопе. Дальнейшие события при митозе состоят в удвоении хромосом (в репликации ДНК) и в их расхождении к двум полюсам, расположенным на разных концах клеток. Митоз завершается делением клетки [104].
Хромосомы яйцеклеток позвоночных и некоторых насекомых на определенных стадиях роста представляют собой двойные нити, в которых на небольших расстояниях друг от друга располагаются вздутия, петли, именуемые хромомерами. Хромосомы принимают вид «ламповых щеток». На стадии «ламповых щеток» происходят интенсивные процессы биосинтеза — транскрипция и трансляция [105]. Добавление гистонов к хромосомам— «ламповым щеткам» вызывает исчезновение петель и резкое ингибирование синтеза РНК [106].
Георгиев исследовал механизм ингибирования синтеза РНК гистонами методом двойной радиоактивной метки. АТФ или ГТФ, меченные Р32-фосфатом, использовались для определения инициации образования цепи, а С14-УТФ — для определения общей скорости ее роста. Добавление гистонов уменьшало соотношение С14/Р32 в синтезируемой РНК. Это показывает, что либо происходит уменьшение скорости роста цепи, либо образуются сравнительно короткие цепи, т. е. гистоны мешают движению полимеразы вдоль матрицы [107]. Матричная активность хроматина примерно в 10 раз меньше, чем свободной ДНК [108, 109]. Удаление определенных гистонов из хроматина увеличивает его матричную активность, причем основную роль здесь играет гистон (см., например, [110]).
Хроматин и модельные комплексы ДНК с гистонами и не- гистоновыми белками исследовались с помощью богатого арсенала методов, в частности, методами спектроскопии [111,112]. По-видимому, ДНК плотно упакована в дезоксинуклеопротеи - дах (ДНП), и конформация ДНК в ДНП отлична от обычной В-конформации. Из химических данных следует, что гистоны расположены в основном в широкой бороздке ДНК и вне ее [113]. Из исследований модельных комплексов следует, что гистоны распределяются на ДНК равномерно — участки с большим содержанием гистонов чередуются с участками свободной или почти свободной ДНК [98]. Около половины ДНК «открыто», свободно от гистонов [131].
В отличие от гистонов, негистоновые белки (НГБ) хромосом содержат не основные, а кислотные остатки. НГБ характеризуются большой гетерогенностью — их молекулярные веса варьируют в широком интервале от 10 000 до 150 000. Они разнообразны функционально— в НГБ содержатся сложные ферментативные системы, в том числе полимеразы. Разнятся не только НГБ разных видов, но и разных тканей одного и того же вида [132].
Доказало, что изменение функции генов, их транскрипции в клеточном цикле сопровождается изменениями состава НГБ и их метаболизма. Стероидные гормоны, влияющие на транскрипцию, воздействуют на НГБ. Содержание НГБ в активной форме хроматина выше, чем в неактивной. Изменения НГБ происходят в клетках, зараженных и трансформированных вирусами, вызывающими рак.
Установлено, что некоторые НГБ способны узнавать специфические нуклеотидные последовательности в ДНК — они связываются с ДНК хозяина, но не с чужеродной ДНК. НГБ снижают ингибирующее влияние гистонов на транскрипцию.
Таким образом, НГБ, по-видимому, регулируют активность генов на уровне транскрипции. Свойства и строение НГБ изучены еще недостаточно, но то, что о них известно, позволяет сформулировать гипотезу о механизме их действия ([132—134], см. также [135]).
НГБ активно фосфорилируются. Фосфорилирование и де- фосфорилирование модифицирует их свойства. Способность НГБ стимулировать синтез РНК в бесклеточной системе зависит от состояния их фосфорилирования. Гипотеза состоит в том, что ген включается присоединением негистонового белка к специфическому участку ДНК, репрессированному гистоном. НГБ фосфорилируется и приобретает отрицательные заряды. Поэтому он отталкивает также отрицательно заряженную ДНК и покидает ее вместе с положительно заряженным гистоном. Остается свободный участок ДНК, способной к транскрипции в РНК [132].
В хромосомах взаимодействие ДНК с белками приводит к образованию «сверхспиральной» структуры, в которой молекулы ДНК свертываются в хроматиды со значительным уменьшением линейных размеров. Предложен ряд моделей нуклеоги - стоновой структуры хроматина. Крик и Клуг разработали модель, в которой свертывание ДНК. в хроматине определяется резкими изломами двойной спирали примерно через каждые 20 пар оснований [136]. Эта модель хорошо объясняет большую совокупность фактов.
Устройство «сверхспирали» хроматина зависит от природы и, в частности, от конформаций гистонов и негистоновых белков.
Цанев и Сендов предположили существование специфического кода для блокирования генов, считая, что кодирование определяется различными комбинациями пяти гистонов [114]. Эта гипотеза противоречит, однако, приведенным фактам, не свидетельствующим о регуляторной роли гистонов. Аргументы в пользу того, что гистоны ответственны за элонгацию цепи ДНК [115], также недостаточно убедительны.
Структура хроматина изучена недостаточно. Сведения о предлагаемых моделях и возможной связи структуры и функции содержатся в ряде обзоров (см., в частности, [116, 132—134]).
В то же время идея о «втором коде», определяющем регуляцию транскрипции, т. е. о коде соответствия между структурой регуляторного белка и структурой ДНК, обоснована в работе Рурского и соавторов [137]. Речь идет об универсальном коде для узнавания ДНК белком, т. е. о соответствии между аминокислотными последовательностями в стереоспецифичном участке регуляторного белка и последовательностью нуклеотидов в том участке ДНК, к которому этот белок присоединяется. В работе [137] предполагается, что участок регуляторного белка состоит из двух антипараллельных сегментов полипептидной цепи, образующих Р-структуру. Узнавание основано на комплементарное™ этой структуры и последовательности пар оснований ДНК - Важное свойство такой последовательности состоит в асимметричном распределении гуанинов между двумя нитями ДНК - В предлагаемом коде шесть основных аминокислотных остатков (Сер, Тре, Асп, Гис, Глн, Цис) и их последовательность в стереоспецифичном участке белка определяет последовательность пар оснований, с которой данный белок преимущественно связывается. Код, разработанный на основе стереохимии, подтвержден на примере взаимодействия Лак-репрес - сора с Лак-оператором (см. стр. 40). Это единственный цока случай белково-нуклеинового взаимодействия, для которого точно установлены и последовательность аминокислот в белке и последовательность оснований в ДНК ([139, 140], см. также [142]).
В этой главе мы остановились главным образом на явлениях молекулярного узнавания, т. е. на специфических взаимодействиях в биомолекулярных системах. Можно считать установленным, что в основе таких разнообразных явлений, как взаимодействие антиген — антитело, рецепция запаха, регуляция биосинтеза белка в прокариотах и эукариотах, а также во взаимодействиях клеток лежат в принципе сходные механизмы узнавания. Именно узнавание на внутримолекулярном, межмолекулярном и надмолекулярном уровнях должно рассматриваться как молекулярная основа биофизики. Особо важную роль здесь играет матричный синтез. В конечном счете молекулярные взаимодействия ответственны за основные особенности живых организмов — за ферментативный катализ биосинтез белка и за регуляцию того и «другого, за мембранный транспорт молекул, ионов и электронов, за механохимические процессы. Мы постоянно будем встречаться с этими взаимодействиями в последующем изложении.
Описанные в §§ 1.6 и 1.7 явления регуляции не стали еще предметом детальных физических исследований. Для этого пока не хватает биологической информации. Однако общие физические принципы регуляции намечены. В то же время уже установленные факты позволяют подойти к построению физико-математических моделей регуляторных процессов (см. гл. 9).